蜂胶对糖尿病大鼠创面表皮干细胞表达的影响

【摘要】目的:观察蜂胶对四氧嘧啶糖尿病大鼠创面表皮干细胞动员的影响。方法:健康Wistar大鼠被随机分为4组:盐水对照组(n=18)、蜂胶对照组(n=18)、盐水模型组(n=22)和蜂胶模型组(n=18)。模型组大鼠为尾静脉注射四氧嘧啶制造的糖尿病模型。造模4周后所有大鼠背部两侧制造直径1.8cm的圆形全皮层皮肤创面。分别用盐水或蜂胶处理伤口,观察各组的创面愈合时间。免疫组化法检测角蛋白14(K14)、角蛋白19(K19)、整合素β1的表达;Western Blot测定K19、整合素β1的蛋白表达水平。结果:与盐水处理相比,蜂胶能明显缩短创面愈合时间(P<0.01),促进创面K14、K19、整合素β1的表达(P<0.01)。结论:蜂胶可以促进糖尿病大鼠创面表皮干细胞活性,加速创面愈合。

【作者】 高畅  贾军宏  楚勤英  唐志雄  马虹颖  李建华  傅小玲  王进伟

【关键词】糖尿病 蜂胶 创面愈合 表皮干细胞

蜂胶是蜜蜂采集植物的树脂,并混和自身的唾液和蜂蜡,咀嚼而成的一种有粘性的胶状物质。有研究表明蜂胶中包含了超过300种已知的物质,其主要成份为类黄酮、萜类、酚类、酯类、矿物质、维生素、脂肪酸等[1]。蜂胶复杂的生物学活性决定了它多样的药理学活性,其中抗菌、抗氧化、抗炎作用可促进创面的愈合[2]

表皮干细胞(epidermal stem cells,ESCs)作为皮肤组织的特异性干细胞,不仅是维持着皮肤新陈代谢的功能,而且与创面修复紧密相关[3]。目前,常用整合素β1(integrinβ1)和角蛋白19(keratin19,K19)同时染色阳性来鉴别ESCs[4],用K14染色阳性来鉴别短暂扩增细胞[5]。本实验在四氧嘧啶诱导的糖尿病大鼠创面模型上,观察蜂胶对创面ESCs阳性表达及创面愈合时间的影响。

1 材料与方法

1.1 实验动物与材料

健康Wistar大鼠80只,雌雄各半,体重250~275g,SPF级,由军事医学科学院动物中心提供。蜂胶(澳洲尤加利蜂胶精华液)进口批准文号为:国食健字J20050020;四氧嘧啶购自美国Sigma公司;K14、K19、整合素β1一抗(福州迈新生物技术开发有限公司产);免疫组化两步法试剂盒(北京中杉金桥生物试剂有限公司产);血糖仪及试纸(拜尔公司,拜安捷);显微镜(奥林巴斯BX51)。

1.2 实验方法

1.2.1 糖尿病大鼠模型的制备

将大鼠随机分组:对照组36只和模型组44只。将模型组大鼠禁食12h后尾静脉注射四氧嘧啶45mg/kg,注射后大鼠自由饮食。1周后测血糖,随机血糖>11.1mmol/L者为糖尿病大鼠。连续4周每周1次监测所有造模大鼠的随机血糖,同时观察体重、饲料消耗量、饮水量和排尿量。模型组大鼠持续血糖升高,体重下降,出现多食、多饮、多尿症状,其中40只随机血糖在16.7~28.7mmol/L,造模成功。

1.2.2 大鼠背部全皮层皮肤创面模型的制备

糖尿病大鼠造模4周后,与对照组大鼠同时腹腔注射10%水合氯醛(0.3ml/kg)麻醉,固定于操作台上,剪去背部毛发,75%酒精和碘伏消毒背部皮肤,用特制打孔器切去大鼠背部两侧直径1.8cm、面积为2.54cm2的全皮层皮肤组织,造成2个创面深达皮下组织的伤口[6]。对照组大鼠随机分为2组,每组18只,分别用盐水和蜂胶处理伤口。造模大鼠随机分为2组,22只采用生理盐水冲洗伤口;18只伤口表面滴加蜂胶4滴。4组大鼠处理后均用无菌凡士林沙条覆盖伤口,无菌纱布包扎固定。单笼饲养,每日换药,自由饮食。

1.2.3 观察指标

观察记录创面上皮完全愈合所需要的时间。伤后3、7、14d,每组处死4只大鼠,取创面组织置于4%多聚甲醛中固定,石蜡包埋。用免疫组化两步法染色,分析创面K14、K19、整合素β1的阳性表达。K14、K19、整合素β1主要在毛囊隆突部及基底层表达,染成棕黄色为阳性表达。在200倍光镜下,随即选取5个视野拍照,采用美国Image-pro Plus(IPP)6.0图像分析软件分析阳性细胞的表达情况。统计各指标的阳性单位(positive unit,PU)[7]。PU值是反映ESCs表达情况的评价指标。

取d7冻存组织,Western Blot检测K19、整合素β1的蛋白表达水平。

1.3 统计学方法

应用SPSS11.5软件学软件,多组间比较采用单因素方差分析(ANOVA)。

2 结果

2.1对糖尿病大鼠皮肤创面愈合的影响

Wistar大鼠制备全皮层皮肤缺损创面后,模型鼠创面愈合水平较对照组明显缓慢。创后14d时盐水模型鼠(图1a,封底)和蜂胶模型鼠的图片(图1b,封底)可见,盐水模型鼠表面脓性渗液较多,伤口面积明显大于蜂胶模型鼠,蜂胶模型鼠创面相对干净,渗出少,愈合速度较快。

观察各组大鼠的创面愈合时间:盐水模型组(30.5±3.4d)显著长于盐水对照组(24.5±3.0d)和蜂胶模型组(26.1±2.1d),均P<0.01;蜂胶对照组的创面愈合时间(21.3±2.1d)显著短于盐水对照组(P<0.05)。

2.2 免疫组化分析结果

表1示,各时间点对照组K14阳性表达细胞PU值均显著高于模型组(P<0.01,P<0.05);蜂胶模型组在各时间点K14阳性表达细胞PU值均显著高于盐水模型组(P<0.01,P<0.05)(图2,封底);蜂胶对照组d7时K14阳性表达细胞PU值高于盐水对照鼠(P<0.05)。

表2示,各时间点对照组K19阳性表达细胞PU值均显著高于模型组(P<0.01);在d3、d7、d14,蜂胶模型组K19阳性表达细胞PU值均高于盐水对照鼠(P<0.05,P<0.01)。

蜂胶对糖尿病大鼠创面表皮干细胞表达的影响

蜂胶对糖尿病大鼠创面表皮干细胞表达的影响蜂胶对糖尿病大鼠创面表皮干细胞表达的影响

蜂胶对糖尿病大鼠创面表皮干细胞表达的影响

注:n=8,与盐水模型鼠相比**P<0.01;与盐水对照鼠相比##P<0.01。

表3示,各时间点对照组整合素β1阳性表达细胞PU值均明显高于模型鼠(P<0.01);在d7、d14,蜂胶模型组整合素β1阳性表达细胞PU值均显著高于盐水模型组(P<0.01,图4见封底);d7蜂胶对照组显著高于盐水对照组(P<0.05)。

2.3 Western Blot分析结果

伤后d7盐水对照组的K19蛋白水平(2.02±0.19)显著高于模型组(P<0.01);蜂胶模型组(1.53±0.13)显著高于盐水模型组(P<0.01);蜂胶对照组(2.73±0.26)显著高于盐水对照组(P<0.01,图5)。伤后d7整合素β1的蛋白质表达,各组结果与K19相似,见图5。

3 讨论

本实验采用尾静脉注射四氧嘧啶制备糖尿病大鼠模型,伤后30d大鼠一直维持较高的血糖水平,每10d测模型组大鼠随机血糖均稳定升高在11.1~26.7mmol/L之间,糖尿病模型稳定可靠。

皮肤受创伤时,ESCs数量及分布发生变化,参与创面修复,ESCs在创面再上皮化过程中是各层表皮细胞的源细胞。角蛋白是上皮细胞的结构蛋白和主要功能蛋白,在细胞内形成广泛的网状结构,随分化程度的不同,表皮细胞表达不同的角蛋白,因而可用于鉴别ESCs、短暂扩增细胞和终末分化细胞。整合素为一类位于细胞膜表面的糖蛋白受体家族分子,主要介导细胞与细胞外基质的黏附,表皮基底细胞表达整合素β1。目前,常用整合素β1和K19同时染色阳性来鉴别ESCs,用K14染色阳性来鉴别短暂扩增细胞。

试验结果表明,K14、K19、整合素β1的表达在四氧嘧啶诱导的糖尿病大鼠皮肤创面中远远低于正常大鼠,四氧嘧啶造成的高血糖状态明显影响了创面ESCs活性,从创面愈合过程中ESCs的动态变化看,ESCs的数量少和活性低是导致糖尿病创面愈合延迟的重要原因。各组大鼠创面K14、K19、整合素β1的表达对比均表明蜂胶对糖尿病大鼠创面ESCs活性更具促进作用,这可能是因为正常大鼠受创后,干细胞活性增强,已处于较高水平,因而蜂胶对其促进效果有限。而糖尿病大鼠因高血糖造成愈合功能损伤,受创后干细胞活性虽增强,但较正常大鼠大幅下降,因而采用蜂胶治疗后,效果更为明显。在创面的修复过程中,糖尿病大鼠各时期ESCs数量及活性均低于正常大鼠,可能是糖尿病状态下ESCs“储备”不足或过早向终末分化细胞分化所致。有研究指出,糖尿病大鼠皮肤基底层的干细胞库出现“干涸现象”或/和细胞功能失调,直接导致了糖尿病大鼠皮肤变薄和伤口难愈,后者可能与糖尿病大鼠皮肤干细胞微环境,即供给干细胞营养的微血管、神经等失调有关[8]

蜂胶中含有丰富的类黄酮、萜类、芳香酸等药理活性成分,类黄酮可促进胶原蛋白的合成,而且类黄酮和其它成份还具有抗菌消炎的功能。本研究从ESCs动员的情况进行探讨,实验结果提示蜂胶可以促进创面ESCs动员,明显加快糖尿病大鼠及正常大鼠创面的愈合速度,在创面治疗特别是糖尿病创面治疗方面有一定的应用前景。

参考文献:

[1]Bankova V,Popova M,Bogdanov S,et al.Chemical Composi-tion of European Propolis:Expected and Unexpected Results[J].Z Naturforsch,2002,57c:530-533.

[2]Banskota AH,Tezuka Y,Kadota S.Recent progress in phar-macological research of propolis[J].Phytother Res,2001,15(7):561-571.

[3]Janes SM,Lowell S,Hutter C.Epidermal stem cells[J].J Pathol,2002,197(4):479-491.

[4]Michel M,Torok N,Godbout MJ,et al.Keratin19as a bio-chemical marker of skin stem cells in vivo and in vitro:Keratin19expressing cells are differentially localized in function of anatomic sites,and their number varies with donor age and culture stage[J].Journal of Cell Science,1996,109(5):1017-1028.

[5]李延仓,李孝建,沈雁.表皮干细胞标记物鉴定及应用现状[J].中国组织工程研究与临床康复,2007,11(46):9329-9332.

[6]付小兵,王亚平,孙同柱,等.糖尿病慢性难愈合创面大鼠模型的制备[J].上海实验动物科学,1997,17(4):217-219.

[7]申洪.免疫组织化学显色反应强度定量方法研究[J].中国组织化学与细胞化学杂志,1995,4(1):89-92.

[8]刘育杰,赖西南,郭文治,等.表皮干细胞在不同病期糖尿病大鼠皮肤中的分布规律[J].中国临床康复,2005,9(3):125-127.

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